一、服务诞生背景
    默瑞（上海）生物科技有限公司作为Partec流式细胞仪在中国的授权代理商，专业服务于中国的农林水产育种研究以及工业颗粒研究专家，提供最优秀的染色体倍性分析仪。
   多年的深耕细作，使得默瑞有机会服务国内近三百家相关研究单位，Partec在中国市场上已经销售和投放500余台流式细胞。
   2016年11月14日-15日默瑞生物受邀参加“第三届园艺植物染色体倍性操作与遗传改良学术研讨会”，本次研讨会，默瑞生物流式细胞仪专家郭强先生做了《染色体倍性分析技术进展》的专题报告。报告针对进一步促进我国园艺植物染色体倍性操作与遗传改良技术的发展及应用提供了一些新的方向，受到与会专家的一致好评。
会后多位专家资讯默瑞生物是否能够提供动植物样本染色体检测服务，带着这个问题，默瑞进行了多次讨论和论证，于2017年3月份正式推出“动植物染色体倍性分析服务”。客户只需要提供动植物样本，试剂耗材、仪器及服务全部由默瑞完成，并提供检测报告。
咨询热线：4006-400-850
手    机：17317196276（钟工）
邮    件：info@moreybio.com
二、植物DNA分析服务范围

三、传统倍性和基因组大小分析方法

传统分析方法，检测效率低

根尖染色体计数实验步骤：
1.取每个再生株根部刚发出的小于1 cm的根5～6条立刻放入饱和对氯二苯溶液中，常温下放置4 h
2.转入卡诺(Camoy s)固定液固定24 h
3.取出的根用蒸馏水冲洗两遍后转入1 mol／L盐酸溶液，60℃水浴中解离6～7 min，然后在蒸馏水中浸泡10 min以上
4.用卡宝品红染色压片，400倍显微镜下观察根尖细胞染色体并计数，每个再生株观察5条根。
四、默瑞生物倍性和基因组大小分析方法
A、快速倍性、基因组大小分析流程

B、快速倍性、基因组大小分析特点

1.简单快速---DNA倍性标本检测时间小于2分钟
2.染色仅需10秒
3.操作便捷---无需制备和染色中期染色体
4.用途广泛---任何植物样品均可被检测：叶、秧苗、愈伤组织、花粉、花药、根茎、花、果实、种子等
5.任何植物、动物、海洋及淡水生物均可检测
6.高精确性---绝大多数动植物倍性检测精度可以达到±1染色体； 
 
C、可配备自动进样系统

• 15秒完成测试，自动检测   下一样本

1. 一次检测96个样品或386孔板

2. 每小时检测240个样本

3. 自动分析样本峰值及倍性

 
D、专业配套试剂及耗材

　　Partec染色体倍性分析仪部分应用案例

　　•南京农业大学(2006)

　　•华中农业大学作物遗传改良国家重点实验室(2001，2011，大规模创制柑橘三倍体)

　　•浙江省农业科学院(2008，白菜型油菜DH系)

　　•郑州果树研究所(2009，葡萄、猕猴桃、梨、核桃)

　　•中国农业科学院柑桔研究所、西南大学柑桔研究所(2014，发掘单倍体资源-加倍DH系-加倍纯系四倍体-杂交三倍体，检测30万份样本，获得单倍体100份、三倍体2810份、四倍体2792份、五倍体1份、八倍体1份、嵌合体5)

　　•北京农林科学院林业果树研究所(2010，桃、草莓、葡萄、板栗)

　　•河北农业大学(2014，中国枣研究中心)

　　•中国热带农业科学院海口实验站、橡胶研究所(2013，火龙果、香蕉) •山东省果树研究所(2001，苹果)

　　•山东农业大学(2008，果蔬)

　　•广东省农业科学院基因中心(2016，香蕉、果蔬)

　　•武汉植物园、华南植物园(2011，猕猴桃品种选育)

　　•湖南师范大学刘筠院士(2007，三倍体湘云鲫，生长快，摄食力强，成活率高，耐低温，肉质鲜嫩，容易捕捞)

　　•北京海淀区组织培养技术实验室(2012，辣椒、茄子花药培养)

　　国内Partec用户近年来发表的部分SCI文章

　　1.Zhenqing Zhao,Honghui Gu, Xiaoguang Sheng,Huifang Yu,Jiansheng Wang.(2016). Genome-Wide Single-Nucleotide Polymorphisms Discovery and High-Density Genetic Map Construction in Cauliflower Using Specific-Locus Amplified Fragment Sequencing. Frontiers in Plant Science, 7(393).

　　2. Wen-Huei Chena, Ching-Yan Tangb, Tsai-Yun Linc, Yuan-Chen Wengb, Yu-Lin Kao.(2011). Changes in the endopolyploidy pattern of different tissues in diploid and tetraploid Phalaenopsis aphrodite subsp. formosana (Orchidaceae).Plant Science, 181(1),31–38.

　　3.Liu, Y., Li, D., Yan, L., & Huang, H.(2015). The Microgeographical Patterns of Morphological and Molecular Variation of a Mixed Ploidy Population in the Species Complex Actinidia chinensis. Plos One, 10(2).

　　4. He W, Qin Q, Liu S, Li T, Wang J, Xiao J, et al. (2012). Organization and Variation Analysis of 5S rDNA in Different Ploidy-level Hybrids of Red Crucian Carp × Topmouth Culter. Plos One, 7(6).

　　5.Yan Yu, Wenxuan Ye, Li He, Xingkui Cai, Ting Liu, Jun Liu.(2013). Introgression of bacterial wilt resistance from eggplant to potato via protoplast fusion and genome components of the hybrids. Plant Cell Reports, 32(11),1687-1701.

　　6. Xiao Cai, Xiang-Yang Kang.(2011). In vitro tetraploid induction from leaf explants of Populus pseudo-simonii Kitag.Plant Cell Reports, 30(9),1771-1778.7. Dawei Li, Yifei Liu, Caihong Zhong,Hongwen Huang.(2010).Morphological and cytotype variation of wild kiwifruit (Actinidia chinensis complex) along an altitudinal and longitudinal gradient in central-west China. Botanical Journal of the Linnean Society, 164(1),72–83.